Tabla de contenido
Idiomas disponibles
Idiomas disponibles
Un contrôle immunodosage, à base de
sérum humain, à trois niveaux de
concentration, contenant de la TSH (parmi
plus de 25 constituants dosables), est
disponible chez Siemens Healthcare
Diagnostics (Référence catalogue :
CON6).
Recueil des échantillons
Le patient n'a pas besoin d'être à jeun et
aucune préparation spéciale n'est requise.
Prélever le sang par ponction veineuse
sur tubes secs et séparer le sérum des
cellules. Comme la TSH présente un lèger
rythme circadien, noter l'heure de
prélèvement.
Il est recommandé de clarifier les
échantillons hyperlipémiques par
ultracentrifugation.
Des échantillons hémolysés peuvent être
révélateurs d'une préparation inadéquate
du prélèvement avant son envoi au
laboratoire ; il faudra donc interpréter les
résultats avec prudence.
Des tubes pour prélèvements sanguins
provenant de fabricants différents peuvent
donner des résultats différents, selon les
matériaux et additifs utilisés, y compris
gels ou barrières physiques, activateurs
de la coagulation et/ou anticoagulants. Le
coffret Coat-A-Count TSH IRMA n'a pas
été testé sur tous les types de tubes
possibles. Veuillez consulter le chapitre
intitulé Autres Types d'Échantillons pour
plus de renseignements sur les tubes qui
ont été évalués.
Volume nécessaire : 200 µl de sérum par
tube.
Conservation : 5 jours à 2–8°C ou 1 mois
20
à –20°C.
Avant le dosage, laisser les échantillons
revenir à température ambiante (15–
28°C), mélanger doucement par rotations
ou retournement. Aliquoter, si nécessaire,
afin d'éviter de répéter les cycles
congélation / décongélation. Ne pas tenter
de décongeler les spécimens congelés à
l'aide d'un bain marie.
Protocole de dosage
immunométrique
Tous les composants doivent être à
température ambiante avant leur utilisation
(15–28°C).
Coat-A-Count TSH IRMA (PIIKTS-8, 2010-11-04)
Etiqueter 16 tubes coatés d'anticorps
1
anti-TSH en duplicate, A (liaison non
spécifique) et de B à H (liaison
maximale LM). Etiqueter les tubes
coatés d'anticorps supplémentaires,
également en duplicate, pour les
échantillons de patients et les
contrôles.
Etiqueter 2 tubes (non coatés) 12 x
75 mm en polypropylène pour l'activité
totale.
21
Standards
A (LNS)
H ("LM")
Pipeter 200 µl de chaque standard,
2
contrôle et échantillon sérique de
patient dans les tubes préparés.
Pipeter directement au fond du
tube. Les échantillons de patients
suspectés de contenir des
concentrations de TSH supérieures au
standard le plus élevé (60 µUI/ml)
doivent être dilués avec le standard
zéro avant le dosage. Il est bon
d'utiliser des embouts de
micropipettes jetables, de changer
d'embout entre les échantillons de
manière à éviter toute contamination.
Les pipettes à « capillaire » et les
pipetteurs-diluteurs automatiques ne
doivent être utilisés que si le risque de
contamination a été évalué et jugé
insignifiant.
Ajouter 100 µl d'anticorps anti-PTH
3
marqué à l'iode 125 dans chaque
tube.
Distribuer directement au fond du
tube. Bien s'assurer que l'échantillon
et le traceur sont parfaitement
mélangés. Une multipette est
recommandée. Les tubes T peuvent
être mis de côté jusqu'au comptage
(étape 6); ils n'ont besoin d'aucun
autre traitement.
B
C
D
E
F
G
µUI/ml
0
0,15
0,5
1,5
4
15
30
60
29
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