Die Standards enthalten, 0; 0,15; 0,5; 1,5;
4; 15; 30 und 60 µIU/ml TSH kalibriert an
der "World Health Organization's Second
International Reference Preparation" für
TSH, 80/558. Weitere Standard-
kurvenpunkte können durch Mischen der
Standards hergestellt werden.
Gepufferte Waschlösung, Konzentrat
(1TSBW*, 3TSBW
†
40 ml* (200 ml
) konzentrierte gepufferte
Salzlösung, mit Tensiden. Unter
Zuhilfenahme eines Transferbehälters,
jede Flasche Konzentrat mit 400 ml*
†
) destilliertem Wasser, auf ein
(2 000 ml
Gesamtvolumen von 440 ml* (2 200 ml
verdünnen. Vor dem Gebrauch gründlich
durchmischen. Bei 2–8°C für 6 Monate
nach der Zubereitung haltbar.
IKTS1: 1 Flasche × 40 ml.
IKTS5: 1 Flasche × 200 ml.
IKTSX: 2 Flaschen × 200 ml.
Erforderliche Laborgeräte und
Hilfsmittel
Gammacounter – kompatibel mit
12x75 mm Röhrchen
Schüttler – ca. 200 Zyklen pro Minute
einstellen
Reagenzienvorbereitung
Destilliertes oder deionisiertes Wasser
Volumetrische Pipetten: 3 ml und 6 ml
Messzylinder - zum Abmessen von 400 ml
†
(2 000 ml
)
Plastikbehälter mit Verschluss – zur
Herstellung und Lagerung der gepufferten
Waschlösung
Immunoassay
Mikropipetten: 100 µl und 200 µl
Dispenser - Für die Zugabe von 2,0 ml der
gepufferten Waschlösung
Dekantierständer – erhältlich bei Siemens
Healthcare Diagnostics (Artikelnummern:
FDR).
Logarithmisches Papier, 4 Dekaden
Immunoassay-Kontrollen (mehrere
Parameter, 3 Konzentrationen)
(Artikelnummer: CON6).
Probengewinnung
Es ist keine besondere Vorbereitung der
Patienten nötig. Blutentnahme durch
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†
)
Venenpunktion
Zusätze, Trennung des Serums von den
Blutzellen, Abnahmezeitpunkt notieren.
Da TSH einer geringen zirkadianen
Rhythmik unterliegt ist der Zeitpunkt der
Blutentnahme zu notieren.
Der Einsatz einer Ultrazentrifuge wird zur
Klärung von lipämischen Proben
empfohlen.
Bei hämolysierten Proben besteht die
Möglichkeit einer unsachgemäßen
Handhabung vor Eintreffen im Labor,
daher sind die Ergebnisse mit Vorsicht zu
interpretieren
†
)
Blutentnahmeröhrchen von verschiedenen
Herstellern können differierende Werte
verursachen. Dies hängt von den
verwendeten Materialien und Additiven
(Gel oder physische Trennbarrieren,
Gerinnungsaktivatoren und /oder
Antikoagulantien) ab. Coat-A-Count TSH
IRMA sind nicht mit allen möglichen
Röhrchenvariationen ausgetestet worden.
Details der getesteten Röhrchenarten sind
dem Kapitel "Alternative Probenarten" zu
entnehmen.
Erforderliche Menge: 200 µl Serum pro
Röhrchen
Lagerung: Bei 2–8°C für 5 Tage, oder 1
Monat bei –20°C.
Die Proben vor Testbeginn auf
Raumtemperatur (15–28°C) bringen und
vorsichtig durchmischen. Um wiederholtes
Einfrieren und Auftauen zu vermeiden bei
Bedarf portionieren. Gefrorene Proben
dürfen nicht durch Erhitzen im Wasserbad
aufgetaut werden.
Testdurchführung
Immunometrischer Assay
Alle Testkomponenten vor Testbeginn auf
Raumtemperatur (15–28°C) bringen.
Jeweils 2 TSH-Antikörper-
1
beschichtete Röhrchen mit A
(unspezifische Bindung, 0-Standard)
und von B bis H (Maximalbindung)
beschriften. Jeweils 2 weitere
Antikörper-beschichtete Röhrchen für
Kontrollen und Patientenproben
beschriften.
Sind die Totalaktivitäts (T) Röhrchen
für die Datenberechnung erforderlich,
2 unbeschichtete 12x75 mm
Coat-A-Count TSH IRMA (PIIKTS-8, 2010-11-04)
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in Röhrchen ohne
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