Abaxis VETSCAN VS2 Manual Del Usuario página 551

plasma o siero e conservato in provette tagliate a 2–8 °C
se il campione non può essere analizzato entro
60 minuti.
• I risultati di proteina totale e albumina di cavalli che si
cibano con fieno potrebbero essere alterati se il campi-
one è stato prelevato entro poche ore dall'ultimo pasto
• I risultati della bilirubina totale potrebbero essere
influenzati negativamente dal fotodegradamento
pioni di sangue intero non analizzati immediatamente
devono essere conservati al buio per non più di 60
minuti. Se il campione non può essere analizzato entro
quell'intervallo, deve essere separato in plasma o siero e
conservato in una provetta tagliata al buio a temperature
6
basse .
• Le concentrazioni di glucosio sono influenzate negati-
vamente dalla durata dell'intervallo dal momento in cui il
paziente ha mangiato per l'ultima volta e dal tipo di cam-
pione raccolto dal paziente. Per interpretare accurata-
mente i risultati del glucosio, i campioni devono essere
prelevati da un paziente rimasto a digiuno per almeno
12 ore. Le concentrazioni di glucosio nel plasma e nel
siero sono tipicamente superiori ai livelli del glucosio nel
4
sangue intero .
C.7 Sostanze interferenti note
• Gli interferenti fisici (emolisi, ittero e lipemia) possono
modificare le concentrazioni riportate di alcuni analiti. Gli
indici dei campioni sono stampati sui risultati per infor-
mare l'operatore dei livelli di interferenti presenti in ogni
campione. Se la presenza di uno o più interferenti
provoca un cambiamento significativo nella concentrazi-
one di un particolare analita, quel risultato viene sop-
presso. Per una spiegazione degli indici del campione e
dei risultati soppressi, vedere
a pagina 8-1.
• L'attività dell'amilasi può essere elevata dalla contami-
nazione del campione con amilasi salivare umana. L'ami-
lasi salivare si riscontra nella saliva umana, nelle
ghiandole sudoripare e nei polmoni
3. Carlson, GP. 1996. Clinical chemistry tests. In: B P Smith,
ed., Large Animal Internal Medicine, 2nd ed. St. Louis.
Mosby-year Book, Inc. pp. 441–469.
4. Coles, EH. 1986. Veterinary Clinical Pathology, 4th ed.
Philadelphia: W.B. Saunders Company; p. 153.
5. Sherwin, JE and R Obernolte. 1989. Bilirubin. In: LA
Kaplan and AJ Pesce, eds., Clinical Chemistry: Theory,
Analysis, and Correlation, 2nd ed. St. Louis: The C.V.
Mosby Company; pp. 1009–1015.
6. Henry, RJ, DC Cannon, and JW Winkelman. 1974. Clinical
Chemistry: Principles and Techniques, 2nd ed. New York:
Harper and Row; pp. 417–421; 1058–1059.
7. Yuan, SK and FJ Liu. 1991. Laboratory diagnosis of gastro-
intestinal tract and exocrine pancreatic disorders. In: JB
Henry, Clinical Diagnosis and Management by Laboratory
Methods, 18th ed. Philadelphia: W.B. Saunders Company;
p. 527.
4
5
. I cam-
"Risoluzione dei problemi"
7
.
Prestazioni dei metodi
• I livelli di potassio sono influenzati dalla presenza di alti
livelli di piastrine (>1,000,000/µL) o globuli bianchi
(>200,000/µL). Il potassio può essere rilasciato da questi
costituenti del sangue quando il sangue viene lasciato
coagularsi. Questo effetto potrebbe essere osservato
anche quando sono presenti cellule anomale presenti
.
• I livelli di potassio nei canidi, felini ed equini possono
essere artificialmente aumentati dal potassio rilasciato
dalle piastrine durante il coagulamento
uli rossi di canidi e felini non contengono livelli significa-
tivi di potassio, con l'eccezione della razza Akita
di potassio negli equini sono accresciuti artificialmente
dall'emolisi.
• I risultati del sodio nei canidi, felini ed equini può
essere ridotto artificialmente a causa della iperlipidemia
o da grave iperproteinemia
C.8 Parametri del test
L'analizzatore chimico VetScan VS2 funziona a tempera-
tura ambiente tra i 15–32 °C. Il tempo di analisi per tutti i
rotori VetScan è <15 minuti. L'analizzatore mantiene il
rotore reagente a una temperatura di 37 °C nel corso
dell'intervallo di misurazione.
C.9 Procedura di test
Nota: Le procedure di funzionamento completo passo
dopo passo sono fornite nel
tagliata" a pagina 4-5.
1. Rimuovere un rotore reagente dal frigorifero. (Il
rotore può essere usato direttamente dal frigorifero.
Non c'è alcun bisogno di riscaldare il rotore.)
2. Prelevare il campione.
3. Rimuovere il rotore reagente dal suo sacchetto.
Espellere eventuale aria o bolle d'aria dal puntale
del dispositivo di trasferimento del campione prima
di dispensare 90–120 µL di campione o controllo nel
rotore attraverso l'apertura di immissione. Un campi-
one di 90 µL determina la formazione di una linea tra
le due frecce incise sul rotore. Se sono presenti bolle
d'aria nella camera, aggiungere una quantità mag-
giore di campione (fino a un totale di 120 µL).
ATTENZIONE: Non battere il rotore sul tavolo o il
piano di lavoro per svuotare l'apertura di immissi-
one, perché ciò potrebbe danneggiare il rotore.
8. Willard, xx. 1989. Electrolyte and acid-base abnormalities.
In: xx Willard, H Tvedten, and GH Turnwald, eds., Small
Animal Clinical Diagnosis by Laboratory Methods. Phila-
delphia: W.B. Saunders Company; pp. 103–120.
9. DiBartola, SP, RA Green, and HS Autran de Morais. 1994.
Electrolytes and acid-base. In: xx Willard, H Tvedten, and
GH Turnwald, eds., Small Animal Clinical Diagnosis by
Laboratory Methods, 2nd ed. Philadelphia: W.B. Saunders
Company; pp. 97–106.
3,9
. I normali glob-
9
. I livelli
3 9
.
"Sequenza procedurale det-
8
.
C-5