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10/22/2003
BBL Sensi-Disc
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Dispensadores de 6 y 8 plazas con autobloqueo
USO PREVISTO
Estos dispensadores Sensi-Disc con autobloqueo alojan 6 u 8 cartuchos de discos Sensi-Disc para pruebas de sensibilidad o discos Taxo para
la diferenciación de organismos anaerobios. Se utilizan para colocar discos sobre placas de Petri de 100 mm cuando se realizan pruebas de
sensibilidad o para la identificación presuntiva de bacilos anaerobios gram negativos
PRINCIPIOS DE UTILIZACION
Los discos se dispensan y se bloquean en la superficie del agar al presionar la perilla de dispensación en la parte superior del dispensador.
El anillo de ajuste gradual permite controlar la altura de la base del dispensador sobre la superficie del agar.
Cada dispensador se suministra con un estuche para su almacenamiento para proteger la unidad de la humedad cuando no se utilice.
PROCEDIMIENTO DE UTILIZACION
Dichos dispensadores se fabrican con esmero y se prueban exhaustivamente Se garantiza un rendimiento libre de problemas si se
comprenden y aplican los procedimientos de utilización correctos.
1. Quitar el dispensador del frigorífico y dejar que alcance la temperatura ambiente.
2. Quitar el dispensador del estuche y colocarlo sobre la superficie de trabajo.
3. Tirar completamente hacia afuera de la perilla negra a un lado del dispensador que muestra la inscripción B-D (1,3 cm
aproximadamente) y deslizar la perilla hacia abajo de manera que quede fija en posición.
4. Insertar los cartuchos.
5. Soltar la perilla negra de manera que vuelva a la posición original para bloquear los cartuchos en el dispensador.
6. Colocar el dispensador sobre la placa de 100 mm.
7. Presionar sobre la perilla de dispensación principal hasta el fondo.
8. Dejar que la perilla de dispensación vuelva a la posición original.
9. Luego, los discos se dispensan simultáneamente y se presionan sobre la superficie del medio.
INSTRUCCIONES ESPECIALES
El dispensador debe completar siempre un ciclo completo antes de utilizarse nuevamente. Si no se ha completado un ciclo completo, o si el
dispensador presenta una resistencia mayor a la normal al presionar la perilla, DETENERSE y comenzar de inmediato el procedimiento de limpieza.
PROCEDIMIENTO DE LIMPIEZA
1. Tirar completamente hacia afuera de la perilla negra a un costado del dispensador y deslizar la perilla hacia abajo de manera que quede
fija en posición.
2. Extraer todos los cartuchos.
3. Elevar el dispensador y colocar sobre una placa de Petri vacía.
4. Realizar el ciclo del dispensador varias veces como se describe en los pasos 6 a 8 en "Procedimiento de utilización".
5. Volver a colocar los cartuchos.
ADVERTENCIAS Y PRECAUCIONES
Para uso diagnóstico in vitro.
Emplear una técnica aséptica y seguir las precauciones habituales contra riesgos microbiológicos durante todos los procedimientos.
CARTUCHOS
El último disco de cada cartucho está marcado con una "X". En cada cartucho se ha insertado un disco de plástico después del disco marcado
con una "X". Así se evita que se haga funcionar el dispensador con un cartucho vacío. Controlar si aparecen discos marcados con una "X", en
cuyo caso reemplazar de inmediato todos los cartuchos.
Cuando se inserten cartuchos en el dispensador, asegurarse de que el primer disco se encuentre centrado al final del cartucho.
PROCEDIMIENTO DE LIMPIEZA Y DESCONTAMINACION
Cada vez que se cambien los cartuchos, o si el dispositivo de bloqueo se contamina al tocar la superficie de agar inoculada, limpiar y
descontaminar el o los dispositivos de bloqueo siguiendo el siguiente procedimiento:
1. Quitar todos los cartuchos del dispensador.
2. Llenar una placa de Petri vacía de 100 mm con 20 - 25 mL de una solución de Lysol al 3%.
3. Llenar una placa de Petri vacía de 100 mm con 20 - 25 mL de una solución de alcohol isopropílico al 85%.
4. Llenar dos placas de Petri de 100 mm con 20 - 25 mL de agua purificada estéril.
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Colocar el dispensador sobre la placa con la solución de Lysol.
6. Presionar la perilla de dispensación hasta liberar los dispositivos de bloqueo. Mantener presionada la perilla durante 30 sec.
7. Repetir los pasos 5 y 6 con la solución de alcohol isopropílico.
8. Repetir los pasos 5 y 6 con cada una de las placas con agua purificada. Así se asegurará de que se han eliminado por completo los
agentes de limpieza.
Los dispositivos de bloqueo ahora están limpios y descontaminados. El resto de alcohol y agua que quede sobre los dispositivos de bloqueo
se evaporará.
La unidad puede guardarse, o, si no se ha completado la prueba, se puede secar soltando los dispositivos de bloqueo varias veces
(presionando la perilla hasta el fondo) con la unidad sobre una toalla, gasa, algodón o cualquier otro material absorbente estéril. También se
deben dejar secar al aire los dispositivos de bloqueo, pero para eso debe transcurrir más tiempo, según la temperatura y la humedad relativa
en el lugar en el que se guarde el dispensador.
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